Antibióticos
Las siguientes tablas describen los agentes antimicrobianos recomendados para realizar pruebas e informar según el organismo específico que se esté probando, ente caso, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp. y Stenotrophomonas maltophilia.
En cuanto a Burkholderia cepacia complex, debido a su falta de confiabilidad en tanto a los puntos de corte de MIC, se eliminaron las pruebas de susceptibilidad recomendadas en el M100 del año 2025. Por la necesidad de tratamientos para Burkholderia cepacia complex, se otorgó una tabla con ciertos antibióticos donde los puntos de corte, en lugar de hablar de Resistente, Intermedio o Sensible, se habla de Wild-Type (WT), una población microbiana sin mecanismos de resistencia fenotípicamente detectables para en agente antimicrobiano evaluados, y Non-Wild-Type (NWT), una población microbiana con mecanismos de resistencia fenitípicamente detectables para los agentes antimicrobianos evaluados.




En las siguientes tablas, se observan tanto el diámetro como los puntos de corte para la Concentración Mínima Inhibitoria (MIC) para diferentes agentes antimicrobianos en Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp. y Stenotrophomonas maltophilia.
Como se menciono anteriormente, para Burkholderia cepacia complex, se recomienda ir a la tabla donde se habla de cepas WT o NWT.
Notas y traducciones para Pseudomonas aeruginosa:
Condiciones de prueba:
-
Medio: Difusión
en disco: MHA
Dilución en caldo: CAMHB; CAMHB con hierro reducido para cefiderocol
Dilución en agar: MHA -
Inóculo: Método
de cultivo en caldo o suspensión de colonias, equivalente a un estándar de
0.5 McFarland; caldo de hemocultivo positivo para agentes antimicrobianos
seleccionados con difusión en disco
- Incubación: 35±2°C;
aire ambiente
Difusión en disco: 16-18 horas
Métodos de dilución: 16-20 horas

NOTAS:
(1) Para difusión en disco, pruebe un máximo de 12 discos en una placa de 150 mm y no más de 6 discos en una placa de 100 mm; los discos deben de colocarse a una distancia mínima de 24 mm de centro a centro. El diámetro de cada zona debe ser claramente medible; las zonas superpuestas impiden una medición precisa. Mida el diámetro de las zonas de inhibición completa (a simple vista), incluido el diámetro del disco. Sostenga la placa petri a unos centímetros de un fondo negro iluminado con luz reflejada. El margen de la zona debe considerarse el área que no muestra un crecimiento visible obvio que pueda detectarse a simple vista. Ignore el crecimiento tenue de colonias diminutas que solo pueden detectarse con una lupa en el borde de la zona de crecimiento inhibido.
(2) La susceptibilidad de P. aeruginosa aislada de pacientes con fibrosis quística se puede determinar de forma fiable mediante métodos de difusión en disco o dilución, pero puede necesitar de una incubación prolongada de hasta 24 horas antes de notificarla como susceptible.
(3) P. aeruginosa puede desarrollar resistencia durante el tratamiento con todos los agentes microbianos. Por lo tanto, los aislamientos que son inicialmente susceptibles, pueden volverse resistentes a los pocos días del inicio del tratamiento. Puede estar justificada la prueba de aislamientos repetidos.
(4) Un intermedio (I) con un ^ en las Tablas 2, indica agentes que tienen el potencial de concentrarse en la orina. El I^es solo para uso informativo. La decisión de notificar I^ es en base a cada laboratorio, según las directrices específicas de la institución y en consulta con el personal médico correspondiente.
(7) Los organismos que resultan susceptibles al agente β-lactámico solo, también se consideran susceptibles al agente combinado β-lactámico. Sin embargo, no se puede asumir que los organismos que resultan susceptibles al agente combinado β-lactámico sean susceptibles al agente β-lactámico solo. De manera similar, los organismos que resultan intermedios o resistentes al agente β-lactámico, solo pueden ser susceptibles al agente combinado β-lactámico.
(8) Los puntos de corte para el intermedio, son solo para proporcionar una zona de amortiguación, para evitar que pequeños factores técnicos no controlados causen discrepancias importantes en la interpretación.
(9) La precisión y reproducibilidad de los resultados de las pruebas de cefiderocol por difusión en disco y microdilución en caldo se ven notablemente afectadas por la concentración de hierro y preparación del inóculo, y pueden variar según el fabricante del disco y del medio. Dependiendo del tipo de variación observada, pueden producirse resultados de falsa resistencia o falsa sensibilidad. Se recomienda analizar aislados posteriores. Se recomienda hablar con los prescriptores y miembros del equipo de administración de antimicrobianos sobre la posibilidad de inexactitudes.
(10) ADVERTENCIA: Los datos clínicos y farmacocinéticos/farmacodinámicos demuestran que el colistín y la polimixina B tienen una eficacia clínica limitada, incluso si se obtiene un resultado intermedio. Se prefieren encarecidamente los agentes alternativos. El colistín y la polimixina B deben usarse en combinación con uno o más agentes antimicrobianos activos. Se recomienda consultar con un especialista en enfermedades infecciosas.
(11) El colistín (metanosulfonato) debe administrarse con una dosis de carga y las dosis máximas ajustadas por función renal.
(12) La polimixina B debe administrarse con una dosis de carga y las dosis máximas recomendadas.
(13) Cuando el colistín o la polimixina B se administran por vía sistémica, es probable que ninguna de las dos sea eficaz para la neumonía.
(14) Para el colistín, los métodos de microdilución en caldo, CBDE y CAT MIC son aceptables. Para la polimixina B, la microdilución en caldo es el único método aprobado. No se deben realizar los métodos de difusión en disco ni de difusión en gradiente.
(15) Los puntos de corte para la tobramicina y la amikacina se basan en distribuciones poblacionales de varias especies, análisis de consecución de objetivos farmacocinéticos/farmacodinámicos con un criterio de valoración de estasis bacteriana neta y datos clínicos limitados. Los datos de resultados clínicos para los aminoglicósidos como monoterapia para infecciones sistémicas son limitados y han dado lugar a peores resultados del tratamiento (para infecciones fuera del tracto urinario) en comparación con otras terapias. Se debe considerar las terapia combinada para la mayoría de las indicaciones, excepto las infecciones urinarias. Se recomienda consultar con un especialista en enfermedades infecciosas.
(16) La tobramicina no predice la susceptibilidad a la gentamicina.
Notas y traducciones para Acinetobacter spp.:
Condiciones de prueba:
-
Medio:
Difusión
en disco: MHA
Dilución en caldo: CAMHB; CAMHB con hierro reducido para cefiderocol
Dilución en agar: MHA -
Inóculo:
Método
de cultivo en caldo o suspensión de colonias, equivalente a un estándar de
0.5 McFarland; caldo de hemocultivo positivo para agentes antimicrobianos
seleccionados con difusión en disco
- Incubación: 35±2°C;
aire ambiente
20-24 horas para todos los métodos

NOTAS:
(1) Para difusión en disco, pruebe un máximo de 12 discos en una placa de 150 mm y no más de 6 discos en una placa de 100 mm; los discos deben de colocarse a una distancia mínima de 24 mm de centro a centro. El diámetro de cada zona debe ser claramente medible; las zonas superpuestas impiden una medición precisa. Mida el diámetro de las zonas de inhibición completa (a simple vista), incluido el diámetro del disco. Sostenga la placa petri a unos centímetros de un fondo negro iluminado con luz reflejada. El margen de la zona debe considerarse el área que no muestra un crecimiento visible obvio que pueda detectarse a simple vista. Ignore el crecimiento tenue de colonias diminutas que solo pueden detectarse con una lupa en el borde de la zona de crecimiento inhibido. Con trimetoprim y sulfonamidas, los antagonistas en el medio pueden un ligero crecimiento; por lo tanto, ignore el crecimiento ligero (20% o menos del césped de crecimiento) y mida el margen más obvio para determinar el diámetro de la zona.
(2) Un hemocultivo positivo se puede utilizar se puede utilizar como inóculo para la prueba de difusión directa en disco de agentes antimicrobianos seleccionados contra Acinetobacter spp.
(4) Los organismos que resultan susceptibles al agente β-lactámico solo, también se consideran susceptibles al agente combinado β-lactámico. Sin embargo, no se puede asumir que los organismos que resultan susceptibles al agente combinado β-lactámico sean susceptibles al agente β-lactámico solo. De manera similar, los organismos que resultan intermedios o resistentes al agente β-lactámico solo pueden ser susceptibles al agente combinado β-lactámico.
(5) Los diámetros de la zona de difusión del disco ≤14 mm no deben interpretarse ni reportarse porque los diámetros de la zona ≤14 mm ocurren con aislamientos resistentes, intermedios y susceptibles. Para aislamientos con diámetros de la zona ≤14 mm, no reporte el cefiderocol sin realizar una prueba de MIC.
(6) Reporte solo sobre el complejo A. baumannii
(7) La precisión y reproducibilidad de los resultados de las pruebas de cefiderocol por difusión en disco y microdilución en caldo se ven notablemente afectadas por la concentración de hierro y preparación del inóculo, y pueden variar según el fabricante del disco y del medio. Dependiendo del tipo de variación observada, pueden producirse resultados de falsa resistencia o falsa sensibilidad. Se recomienda analizar aislados posteriores. Se recomienda hablar con los prescriptores y miembros del equipo de administración de antimicrobianos sobre la posibilidad de inexactitudes.
(8) ADVERTENCIA: Los datos clínicos y farmacocinéticos/farmacodinámicos demuestran que el colistín y la polimixina B tienen una eficacia clínica limitada, incluso si se obtiene un resultado intermedio. Se prefieren encarecidamente los agentes alternativos. El colistín y la polimixina B deben usarse en combinación con uno o más agentes antimicrobianos activos. Se recomienda consultar con un especialista en enfermedades infecciosas.
(9) El colistín (metasulfonato) debe administrarse con una dosis de carga y las dosis máximas ajustadas por la función renal.
(10) La polimixina B debe administrarse con una dosis de carga y las dosis máximas recomendadas.
(11) Cuando el colistín o la polimixina B se administrar por vía sistémica, es poco probable que el fármaco sea eficaz para neumonía.
(12) El único método de MIC aprobado es la microdilución en caldo. No se debe realizar CBDE, CAT, difusión en disco ni difusión en gradiente.
(13) Si es necesario para el tratamiento, se indican pruebas confirmatorias de MIC para aislamientos con zonas de 18-21 mm para evitar informar resultados falsos o intermedios.
Notas y traducciones para Stenotrophomonas maltophilia.:
Condiciones de prueba:
-
Medio:
Difusión
en disco: MHA
Dilución en caldo: CAMHB; CAMHB con hierro reducido para cefiderocol
Dilución en agar: MHA - Inóculo: Método de cultivo en caldo o suspensión de colonias, equivalente a un estándar de 0.5 McFarland.
- Incubación: 35±2°C;
aire ambiente
20-24 horas para todos los métodos

NOTAS:
(1) Para difusión en disco, pruebe un máximo de 12 discos en una placa de 150 mm y no más de 6 discos en una placa de 100 mm; los discos deben de colocarse a una distancia mínima de 24 mm de centro a centro. El diámetro de cada zona debe ser claramente medible; las zonas superpuestas impiden una medición precisa. Mida el diámetro de las zonas de inhibición completa (a simple vista), incluido el diámetro del disco. Sostenga la placa petri a unos centímetros de un fondo negro iluminado con luz reflejada. El margen de la zona debe considerarse el área que no muestra un crecimiento visible obvio que pueda detectarse a simple vista. Ignore el crecimiento tenue de colonias diminutas que solo pueden detectarse con una lupa en el borde de la zona de crecimiento inhibido. Con trimetoprim y sulfonamidas, los antagonistas en el medio pueden permitir un ligero crecimiento; por lo tanto, ignore el crecimiento ligero (20% o menos del césped de crecimiento) y mida el margen más obvio para determinar el diámetro de la zona.
(3) Los puntos de corte están basados en las propiedades de farmacocinética/farmacodinámica, las distribuciones de MIC, y datos clínicos limitados.
(4) La precisión y reproducibilidad de los resultados de las pruebas de cefiderocol por difusión en disco y microdilución en caldo se ven notablemente afectadas por la concentración de hierro y la preparación del inóculo, y pueden variar según el fabricante del disco y del medio. Dependiendo del tipo de variación observada, pueden producirse resultados de falsa resistencia o falsa sensibilidad. Se recomienda analizar los aislamientos posteriores. Se recomienda hablar con los prescriptores y los miembros del equipo de administración de antimicrobianos sobre la posible inexactitud.
(5) Rx: El levofloxacino no debe utilizarse solo para la terapia antimicrobiana.
(6) Rx: El trimetoprim-sulfametoxazol no debe utilizarse solo para la terapia antimicrobiana.
(7) No se informa de forma rutinaria sobre organismos aislados del tracto urinario.
Notas para Burkholderia cepacia complex:
Condiciones de prueba:
-
Medio:
Dilución
en caldo: CAMHB
- Inóculo: Método de cultivo en caldo o suspensión de colonias, equivalente a un estándar de 0.5 McFarland
- Incubación: 35±2°C; aire ambiente; 20-24 horas
(2) Los laboratorios pueden considerar agregar el siguiente comentario al informe de laboratorio: "Las pruebas de susceptibilidad a los antimicrobianos no se realizan de forma rutinaria para el complejo B. cepacia debido a la falta de métodos de prueba precisos. Las MIC para ceftazidima, levofloxacino, meropenem, minociclina o trimetoprim-sulfametoxazol con aislados wild-type son altas y podrían estar por encima de las MIC que normalmente se alcanzan con la dosificación rutinaria de antimicrobianos."
(3) Si se realizan pruebas, la microdilución en caldo de referencia (congelada) es el único método reproducible y los laboratorios podrían considerar incluir el comentario: "Se desconoce la correlación de los valores de MIC con el resultado clínico."